体外膜肺氧合患者医院感染病原菌分布及危险因素分析

宋琳, 林华, 郑瑞强, 蒋伟, 李向惠, 邵俊

宋琳, 林华, 郑瑞强, 蒋伟, 李向惠, 邵俊. 体外膜肺氧合患者医院感染病原菌分布及危险因素分析[J]. 实用临床医药杂志, 2022, 26(15): 8-14. DOI: 10.7619/jcmp.20220979
引用本文: 宋琳, 林华, 郑瑞强, 蒋伟, 李向惠, 邵俊. 体外膜肺氧合患者医院感染病原菌分布及危险因素分析[J]. 实用临床医药杂志, 2022, 26(15): 8-14. DOI: 10.7619/jcmp.20220979
SONG Lin, LIN Hua, ZHENG Ruiqiang, JIANG Wei, LI Xianghui, SHAO Jun. Analysis in pathogenic bacteria distribution and risk factors of nosocomial infection in patients with extracorporeal membrane oxygenation[J]. Journal of Clinical Medicine in Practice, 2022, 26(15): 8-14. DOI: 10.7619/jcmp.20220979
Citation: SONG Lin, LIN Hua, ZHENG Ruiqiang, JIANG Wei, LI Xianghui, SHAO Jun. Analysis in pathogenic bacteria distribution and risk factors of nosocomial infection in patients with extracorporeal membrane oxygenation[J]. Journal of Clinical Medicine in Practice, 2022, 26(15): 8-14. DOI: 10.7619/jcmp.20220979

体外膜肺氧合患者医院感染病原菌分布及危险因素分析

基金项目: 

江苏省卫生健康委科研课题指导性项目 Z2020055

江苏省“333工程”科研项目 BRA2020183

江苏省扬州市科技计划面上项目 YZ2021059

江苏省苏北人民医院特殊重大扶持技术项目 FCJS202101

详细信息
    通讯作者:

    邵俊, E-mail: sjun1982@163.com

  • 中图分类号: R378;R459.7

Analysis in pathogenic bacteria distribution and risk factors of nosocomial infection in patients with extracorporeal membrane oxygenation

  • 摘要:
    目的 

    分析体外膜肺氧合(ECMO)患者医院感染病原菌分布及危险因素。

    方法 

    分析76例接受ECMO治疗患者的临床资料, 分为感染组与非感染组。分析2组患者感染情况及其危险因素、检出病原菌分布及其耐药性,采用受试者工作特征(ROC)曲线分析ECMO术后医院感染的危险因素。

    结果 

    76例患者医院感染发生率为53.95%(41/76), 下呼吸道(76.12%)为主要感染部位,革兰氏阴性杆菌检出率最高(85.07%)。2组患者在年龄、机械通气时间、ECMO辅助时间、抗菌药使用时间、中心静脉置管时间、导尿管置管时间方面比较,差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。Logistic回归分析显示, ECMO辅助时间、机械通气时间是发生医院感染的独立危险因素(P<0.05)。ROC曲线分析显示, ECMO辅助时间预测ECMO后医院感染的曲线下面积(AUC)为0.812, 最佳临界值为128.04 h, 敏感性为68.3%, 特异性为85.7%;机械通气时间预测ECMO后医院感染的AUC为0.873, 最佳临界值为64.48 h, 敏感性为97.6%, 特异性为68.6%。

    结论 

    ECMO术后医院感染率较高,下呼吸道为主要感染部位,病原菌多为革兰氏阴性杆菌,多重耐药菌比例高,机械通气时间和ECMO辅助时间是发生医院感染的独立危险因素。

    Abstract:
    Objective 

    To analyze the pathogenic bacteria distribution and risk factors of nosocomial infection in patients with extracorporeal membrane oxygenation (ECMO).

    Methods 

    Clinical materials of 76 patients with ECMO were analyzed, and they were divided into infection group and non-infection group. The infection situation and its risk factors as well as the distribution of detected pathogenic bacteria and their drug resistance were analyzed, and the risk factors of nosocomial infection after ECMO were analyzed by receiver operating characteristic (ROC) curve.

    Results 

    The incidence of nosocomial infection in 76 patients was 53.95% (41/76), lower respiratory tract (76.12%) was the main infection site, and the detection rate of Gram-negative bacilli was the highest (85.07%). There were significant differences in age, mechanical ventilation time, ECMO assisted time, antibacterial drug use time, central venous catheterization time and catheter catheterization time between the two groups (P < 0.05 or P < 0.01). Logistic regression analysis showed that ECMO assisted time and mechanical ventilation time were the independent risk factors for nosocomial infection (P < 0.05). ROC curve analysis showed that the area under the curve (AUC) of ECMO assisted time to predict nosocomial infection after ECMO was 0.812, the best critical value was 128.04 h, the sensitivity was 68.3%, and the specificity was 85.7%; the AUC of mechanical ventilation time in predicting nosocomial infection after ECMO was 0.873, the best critical value was 64.48 h, the sensitivity was 97.6%, and the specificity was 68.6%.

    Conclusion 

    The nosocomial infection rate after ECMO is high, the lower respiratory tract is the main infection site, and most of pathogenic bacteria are Gram-negative bacteria, the proportion of multidrug-resistant bacteria is high, and mechanical ventilation time and ECMO assisted time are the independent risk factors for nosocomial infection.

  • 子痫前期(PE)属于妊娠期高血压疾病,是妊娠期特有的一种并发症,发生率为2%~5%[1-2]。PE可导致孕产妇发生子痫、肝肾功能衰竭甚至死亡,同时可引发早产和胎儿生长受限等问题[3]。PE的发病机制十分复杂,研究[4]表明,妊娠时PE患者的血管内皮受损和全身炎症、免疫反应可能与发病机制密切相关。BURTONG J等[5]研究发现,CXC型趋化因子配体12(CXCL12)具有多种功能,包括趋化、血管生成、血管转移、干细胞归巢和器官发生等,与血管内皮变化关系密切。人类软骨糖蛋白-39(YKL-40)参与了细胞的增殖与活化、血管生成、细胞凋亡以及炎症应答等过程[6]。本研究采用酶联免疫吸附试验(ELISA)和免疫组化法(IHC)检测正常晚期妊娠孕妇和PE患者血清和胎盘组织中CXCL12和YKL-40的表达,探讨CXCL12、YKL-40与PE发病机制的关系,现报告如下。

    选取2018年8月-2021年7月在江苏省扬州大学临床医学院产科住院分娩的100例孕妇,其中50例正常妊娠孕妇设为对照组, 50例PE孕妇设为PE组, PE诊断标准依据《妇产科学(第9版)》[7]。2组孕妇的孕周、孕产次、年龄、体质量指数比较,差异无统计学意义(P>0.05), 2组孕妇均未临产,均无产科其他合并症,分娩方式均为剖宫产。排除有感染、免疫性疾病、原发性高血压、肾脏疾病的患者; 排除有吸烟、酗酒等不良生活习惯的患者; 排除有输血、手术及外伤史的患者。

    收集孕妇空腹静脉血, 3 000转/min分离血清。采用ELISA测定孕妇血中CXCL12和YKL-40浓度,试剂购自美国Life Science公司,按照试剂盒说明书操作。采用IHC两步法对2组孕妇胎盘组织中CXCL12、YKL-40的蛋白表达情况进行检测(具体步骤参照所购试剂盒操作说明书)。CXC12L、YKL-40一抗的工作浓度均为1∶ 200, 设置空白对照[采用磷酸盐缓冲液(PBS)代替一抗]。

    获得各标准品及样本光密度值(OD值),再减去空白孔的OD值,而后作图。选取标准品的浓度作为纵坐标,选取OD值为横坐标,绘制标准曲线; 根据样品的OD值,依据标准曲线查出相应的浓度,乘以稀释倍数即为样品的实际浓度。

    采用染色积分评价标准,对CXCL12、YKL-40蛋白的表达水平进行检测,在每张切片中随机选取10个视野,在显微镜高倍镜下观察(放大倍数400倍),结果出现细胞核或细胞浆内棕黄色颗粒即为阳性染色。根据每张切片上染色强度及阳性细胞百分率综合分析: 0~1分为(-); 2~3分为(+); 4~5分为(); 5~6分为()。

    采用SPSS 22.0软件分析数据,计量资料采用(x±s)表示,采用t检验和方差分析进行统计学分析,相关性分析采用Pearson相关分析及Spearman等级分析, P<0.05为差异有统计学意义。

    2组孕妇的年龄、孕周、体质量指数比较,差异无统计学意义(P>0.05); PE组收缩压、舒张压、24 h尿蛋白定量高于对照组,新生儿出生体质量低于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 1

    表  1  2组孕妇一般资料比较(x±s)
    一般资料 对照组(n=50) PE组(n=50)
    年龄/岁 26.45±3.10 28.98±3.38
    孕周/周 38.30±0.79 35.67±3.51
    体质量指数/(kg/m2) 27.36±3.12 29.65±2.13
    收缩压/mmHg 116.30±5.78 151.92±9.64*
    舒张压/mmHg 76.10±6.83 108.90±9.25*
    24 h尿蛋白定量/g 0.15±0.05 3.11±2.58*
    新生儿出生体质量/g 3 209.20±309.06 2 394.28±312.38*
    与对照组比较, * P<0.05。
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    PE组患者血清CXCL12、YKL-40水平高于对照组,差异均有统计学意义(P<0.05), 见表 2

    表  2  2组血清CXCL12表达比较(x±s)  ng/mL
    组别 n CXCL12 YKL-40
    对照组 50 8.43±4.20 88.20±21.40
    PE组 50 24.70±5.76* 119.52±46.38*
    CXCL12: CXC型趋化因子配体12;
    YKL-40: 人类软骨糖蛋白-39。与对照组比较, * P<0.05。
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    IHC发现, CXCL12蛋白主要表达于胎盘合体滋养层细胞, PE组胎盘组织中CXCL12的表达强度高于对照组,差异有统计学意义(χ2=5.367, P<0.05)。见表 3。YKL-40蛋白在妊娠阶段主要表达于胎盘合体滋养层细胞,胞核及间质细胞的胞浆也有少量表达, PE组胎盘组织中YKL-40的表达强度高于对照组,差异有统计学意义(χ2=6.472, P<0.05)。见表 4

    表  3  2组胎盘组织中CXCL12蛋白表达水平比较
    组别 n CXCL12表达强度 χ2 P
    - +
    对照组 50 31 12 7 0 5.367 0.005
    PE组 50 7 10 17 16
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    表  4  2组胎盘组织中YKL-40蛋白表达水平比较
    组别 n YKL-40表达强度 χ2 P
    - +
    对照组 50 24 17 9 0 6.472 0.005
    PE组 50 4 8 18 20
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    PE是妊娠期特有并发症,症状主要为高血压、蛋白尿,严重者可引起子痫,导致多器官功能衰竭,是导致围产期母婴死亡的主要原因。近年来,国外学者[3-5, 7]提出了PE病因学的两步学说: 第一步发生在妊娠早期,发育不良的滋养层细胞导致了胎盘形成不良,引发胎盘缺血缺氧; 第二步是胎盘缺氧进一步加重,包括炎症因子等许多因子释放到母体循环中,导致了母体免疫-炎症系统失衡和内皮细胞功能紊乱,进而引发PE临床症状。PE的两步学说认为PE的发生机制可能与胎盘血管病变导致缺氧和母体免疫-炎症系统失衡有关,正常孕妇体内同样存在轻微炎症应答,但PE孕妇免疫-炎症系统失衡促使炎症应答被放大,导致PE发生。目前研究[1-5]发现, PE孕妇较正常妊娠孕妇的趋化因子和炎性因子水平显著升高,提示在PE的发生机制中,血管内皮受损和免疫-炎症系统失衡可能发挥了作用。

    趋化因子包括稳态CXCL12和炎症趋化因子CXCL9、CXCL10等[8-10]。CXCL12的功能主要是控制细胞定向移动,在介导炎症反应、参与多种功能活动如造血干细胞迁移及归巢、恶性血液系统肿瘤的转移和侵润等方面都起着重要的作用[8-10]。CXCL12与CXCR4是一对独特的趋化因子受体-配体,其相互作用不仅影响免疫细胞的活化、迁移、募集等,还参与肿瘤侵袭及转移过程[9]。此外,在血管生成与血管再生方面, CXCL12也发挥了关键作用[10]。目前普遍认为绒毛外滋养细胞在建立子宫胎盘血液循环过程中,通过侵蚀子宫螺旋小动脉产生滋养细胞浅着床是妊娠期高血压发病的关键环节。研究[11-12]发现, CXCL12在PE患者胎盘中表达呈阳性,且随着病情严重程度的增加,其表达也逐步增强。研究[12]发现, CXCL12在胎盘组织中的表达可能主要在妊娠早期发挥作用。CXCL12及其受体广泛存在于胎盘组织和细胞中, CXCL12通过多个过程干扰母胎界面,如胎盘侵袭和胎盘血管生成,影响胎盘和胎儿形成。研究[13-14]表明, IHC显示PE胎盘组织中CXCL12上调可能是代偿机制的结果。氧气对妊娠至关重要,CXCL12的表达通常与缺氧环境有关,缺氧会刺激滋养层细胞而增强CXCL12的表达[15]

    目前已有研究单独对趋化因子CXCL10、CXCL12在PE的表达进行了分析,但研究结果[10, 12, 16-17]并不一致。由于PE病因和发病机制十分复杂,可能是多种因素在PE早期和中晚期同时共同作用的结果,且在PE早期和中晚期的作用机制也可能不一致。既往研究[16-17]发现稳态CXCL12和炎症趋化因子CXCL9、CXCL10、CXCL12在PE的表达结果有所不同, CXCL12可能只在PE早期有变化。但近期研究[18-19]在PE早期发现趋化因子CXCL12与慢性炎症和免疫激活有关, CXCL12趋化因子参与PE早期的发病机制,并在PE发生的异常新生血管形成、胚胎发育和炎症反应中发挥重要作用。PE患者早期趋化因子的变化可能是一种代偿现象,当促炎趋化因子水平升高后,特别是在妊娠期中晚期,全身炎症因子水平升高,导致CXCL12失去稳定状态,与炎症趋化因子CXCL9、CXCL10等共同参与炎症免疫反应,加重了PE器官病变[18-19]。本研究发现, PE患者CXCL12水平升高,提示机体出现趋化因子和促炎免疫细胞、细胞因子增加,如胎盘急性炎症病变的细胞因子白细胞介素-6(IL-6)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)及YKL-40等水平升高,进一步会导致母体系统内皮功能障碍,促进PE病情发展[20], 这与PE病因学的两步学说一致。

    在哺乳动物中, YKL-40主要由多种炎性相关细胞合成和分泌,如巨噬细胞、肝星状细胞、血管平滑肌细胞、中性粒细胞和软骨细胞。因此,这种蛋白质被称为相关的急性和慢性炎症进展的生物标志物[21-22]。YKL-40在先天免疫系统激活和细胞外基质重塑中发挥重要作用, YKL-40通过各种免疫细胞如中性粒细胞、巨噬细胞、内皮细胞等参与免疫和炎症反应; YKL-40还是一种有效的血管生成因子,特别是在动脉粥样硬化斑块的形成中发挥作用,许多促炎细胞因子如IL-6、TNF、IL-13和IL-18可以上调YKL-40表达,促进血管生成和各种炎症反应。DENG Y J等[22]发现YKL-40可能参与了胎盘的生成和发育以及人类胚胎干细胞的分化,但YKL-40在胎盘中的确切作用以及如何参与转化为母体血浆中的YKL-40尚未明确。本研究发现,在正常妊娠孕妇和PE患者的血清和胎盘组织中YKL-40均有表达,但是PE患者YKL-40的表达水平显著高于正常对照组,推测PE的发生发展与YKL-40的表达有关系,这可能与YKL-40参与血管生成和炎症反应有关。研究[23-24]报道,炎症细胞因子TNF-α、IL-1β可以通过核因子κB(NF-κB)信号突进诱导YKL-40在软骨细胞的表达和持续性分泌,在YKL-40的启动子区域亦含有NF-κB的结合位点, YKL-40的表达可能受NF-κB的调控。最新的对PE病因学的研究[25]更倾向于母体炎症系统激活的说法,炎症与PE的关系甚为密切,易感机体在内在因素和外在因素共同作用之下,激活了NF-κB, 并与YKL-40启动子上的NF-κB结合位点结合,导致YKL-40表达增加,从而引起体内炎症因子的释放,从而导致PE患者母体和胎儿发生一些临床症状,但尚待进一步的研究[26]确认。

    综上所述,本研究发现CXCL12、YKL-40在PE患者中高表达,但具体的调节机制尚未阐明,只是说明PE可能与血管内皮受损和炎症免疫相关,后续需要进一步监测PE患者不同时期的血清CXCL12和YKL-40水平变化,这对动态监测PE患者病情变化、及时治疗具有一定的意义。

  • 图  1   ECMO辅助时间及机械通气时间对ECMO后医院感染预测价值的ROC曲线

    表  1   ECMO术后医院感染病原菌分布及构成比(n=67)[n(%)]

    病原菌 下呼吸道 血液 泌尿道 消化道 皮肤软组织 胸膜腔 合计
    革兰氏阴性杆菌 47(70.15) 5(7.46) 2(2.99) 0 2(2.99) 1(1.49) 57(85.07)
      鲍曼不动杆菌 19(28.36) 1(1.49) 0 0 0 1(1.49) 21(31.34)
      肺炎克雷伯菌 9(13.43) 1(1.49) 0 0 0 0 10(14.93)
      铜绿假单胞菌 5(7.46) 0 0 0 1(1.49) 0 6(8.96)
      嗜麦芽窄食单胞菌 5(7.46) 1(1.49) 0 0 0 0 6(8.96)
      产气肠杆菌 3(4.48) 0 0 0 0 0 3(4.48)
      洋葱伯克霍尔德菌 2(2.99) 0 0 0 0 0 2(2.99)
      阴沟肠杆菌 1(1.49) 0 0 0 0 0 1(1.49)
      奇异变形杆菌 1(1.49) 0 0 0 0 0 1(1.49)
      大肠埃希菌 0 2(2.99) 2(2.99) 0 1(1.49) 0 5(7.46)
      其他革兰氏阴性杆菌 2(2.99) 0 0 0 0 0 2(2.99)
    革兰氏阳性球菌 1(1.49) 4(5.97) 1(1.49) 0 0 0 6(8.96)
      溶血葡萄球菌 0 1(1.49) 0 0 0 0 1(1.49)
      金黄色葡萄球菌 1(1.49) 0 0 0 0 0 1(1.49)
      表皮葡萄球菌 0 2(2.99) 0 0 0 0 2(2.99)
      屎肠球菌 0 0 1(1.49) 0 0 0 1(1.49)
      粪肠球菌 0(1.49) 1(1.49) 0 0 0 0 1(1.49)
    真菌 3(4.48) 0 1(1.49) 0 0 0 4(5.97)
      白念珠菌 2(2.99) 0 1(1.49) 0 0 0 3(4.48)
      曲霉菌 1(1.49) 0 0 0 0 0 1(1.49)
    合计 51(76.12) 9(13.43) 4(5.97) 0 2(2.99) 1(1.49) 67(100.00)
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    表  2   主要革兰氏阴性菌对抗菌药物的耐药率

    抗菌药物 鲍曼不动杆菌(n=19) 肺炎克雷伯菌(n=9) 铜绿假单胞菌(n=5)
    耐药菌株数/株 耐药率/% 耐药菌株数/株 耐药率/% 耐药菌株数/株 耐药率/%
    复方新诺明 12 63.16 6 66.67 3 60.00
    氨曲南 16 84.21 7 77.78 4 80.00
    头孢哌酮/舒巴坦 16 84.21 8 88.89 3 60.00
    头孢替坦 15 78.95 5 55.56 4 80.00
    头孢吡肟 13 68.42 6 66.67 3 60.00
    亚胺培南 14 73.68 6 66.67 4 80.00
    左旋氧氟沙星 14 73.68 5 55.56 3 60.00
    美罗培南 13 68.42 7 77.78 3 60.00
    米诺环素 19 100.00 6 66.67 3 60.00
    哌拉西林 19 100.00 9 100.00 4 80.00
    头孢呋辛 16 84.21 8 88.89 4 80.00
    头孢唑肟 13 68.42 7 77.78 3 60.00
    头孢他啶 13 68.42 6 66.67 3 60.00
    替卡西林 19 100.00 9 100.00 3 60.00
    哌拉西林/他唑巴坦 17 89.47 9 100.00 4 80.00
    头孢噻肟 14 73.68 7 77.78 3 60.00
    莫西沙星 12 63.16 6 66.67 3 60.00
    替加环素 13 68.42 1 11.11 3 60.00
    阿米卡星 11 57.89 4 44.44 2 40.00
    头孢呋辛酯 15 78.95 7 77.78 4 80.00
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    表  3   主要革兰氏阳性菌对抗菌药物的耐药率

    革兰氏阳性菌 耐药情况 氯霉素 红霉素 青霉素 左旋氧氟沙星 苯唑西林 庆大霉素 万古霉素 克林霉素 利奈唑胺
    表皮葡萄球菌(n=2) 耐药菌株数/株 2 1 2 2 1 1 0 1 2
    耐药率/% 100.00 50.00 100.00 100.00 50.00 50.00 0 50.00 100.00
    金黄色葡萄球菌(n=1) 耐药菌株数/株 1 1 1 0 1 1 0 1 0
    耐药率/% 100.00 100.00 100.00 0 100.00 100.00 0 100.00 0
    溶血葡萄球菌(n=1) 耐药菌株数/株 1 1 1 1 1 1 0 0 0
    耐药率/% 100.00 100.00 100.00 100.00 100.00 100.00 0 0 0
    粪肠球菌(n=1) 耐药菌株数/株 1 0 1 0 0 0 0 0 0
    耐药率/% 100.00 0 100.00 0 0 0 0 0 0
    屎肠球菌(n=1) 耐药菌株数/株 1 1 1 1 0 1 0 1 0
    耐药率/% 100.00 100.00 100.00 100.00 0 100.00 0 100.00 0
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    表  4   ECMO术后医院感染的单因素分析(x±s)[n(%)][M(P25, P75)]

    因素 感染组(n=41) 非感染组(n=35)
    年龄/岁 56.76±13.66 47.49±17.24*
    男性 28(68.29) 21(60.00)
    高血压 24(58.54) 12(34.28)
    糖尿病 12(29.27) 13(37.14)
    机械通气时间/h 221.92(134.53, 281.85) 32.73(7.87, 128.47)**
    ECMO辅助时间/h 158.33(115.17, 196.38) 84.05(30.45, 114.71)**
    抗菌药物使用时间/d 11.00(6.00, 16.00) 5.00(2.00, 9.00)**
    中心静脉置管时间/d 10.00(7.00, 16.00) 5.00(1.50, 8.00)**
    导尿管置管时间/d 13.00(7.00, 17.00) 6.00(3.00, 8.50)**
    与感染组比较, * P<0.05, * * P<0.01。
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    表  5   ECMO术后发生医院感染危险因素的Logistic回归分析

    变量 B SE Wald OR 95%CI P
    年龄/岁 0.026 0.025 1.058 1.026 0.977~1.079 0.304
    机械通气时间/h 0.018 0.006 9.136 1.018 1.006~1.030 0.003
    ECMO辅助时间/h 0.017 0.008 4.960 1.017 1.002~1.033 0.026
    抗菌药物使用时间/d 0.001 0.078 0.000 1.001 0.859~1.167 0.986
    中心静脉置管时间/d 0.073 0.123 0.354 1.076 0.846~1.369 0.552
    导尿管置管时间/d -0.217 0.115 3.599 0.805 0.643~1.007 0.058
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    表  6   ECMO辅助时间及机械通气时间对ECMO后医院感染预测价值的ROC曲线分析结果

    危险因素 AUC 最佳临界值 敏感性/% 特异性/% 95%CI 最大约登指数 P
    下限 上限
    ECMO辅助时间/h 0.812 128.04 68.3 85.7 0.714 0.909 0.54 <0.001
    机械通气时间/h 0.873 64.48 97.6 68.6 0.053 0.793 0.66 <0.001
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  • [1]

    BRODIE D, SLUTSKY A S, COMBES A. Extracorporeal life support for adults with respiratory failure and related indications: a review[J]. JAMA, 2019, 322(6): 557-568. doi: 10.1001/jama.2019.9302

    [2]

    HILL J D, O'BRIEN T G, MURRAY J J, et al. Prolonged extracorporeal oxygenation for acute post-traumatic respiratory failure (shock-lung syndrome). Use of the Bramson membrane lung[J]. N Engl J Med, 1972, 286(12): 629-634. doi: 10.1056/NEJM197203232861204

    [3]

    WANG D W, HU B, HU C, et al. Clinical characteristics of 138 hospitalized patients with 2019 novel coronavirus-infected pneumonia in Wuhan, China[J]. JAMA, 2020, 323(11): 1061-1069. doi: 10.1001/jama.2020.1585

    [4] 唐晓, 蒲琳, 张佳莹, 等. 体外膜肺氧合治疗危重症新型冠状病毒肺炎和新型甲型H1N1流感病毒性肺炎临床特征和预后比较[J]. 中华医学杂志, 2021, 101(8): 579-585.
    [5]

    ABRAMS D, COMBES A, BRODIE D. Extracorporeal membrane oxygenation in cardiopulmonary disease in adults[J]. J Am Coll Cardiol, 2014, 63(25 Pt A): 2769-2778.

    [6] 闫晓蕾, 李群, 杨勇, 等. 心脏术后体外膜肺氧合支持治疗的医院感染分析[J]. 中华医院感染学杂志, 2011, 21(3): 462-465. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-ZHYY201103023.htm
    [7] 王静, 熊莹, 施颖, 等. 成人心脏术后患者体外膜肺氧合治疗相关医院感染的危险因素及病原学分析[J]. 中华临床感染病杂志, 2019, 12(1): 38-43. doi: 10.3760/cma.j.issn.1674-2397.2019.01.006
    [8]

    AUBRON C, CHENG A C, PILCHER D, et al. Infections acquired by adults who receive extracorporeal membrane oxygenation: risk factors and outcome[J]. Infect Control Hosp Epidemiol, 2013, 34(1): 24-30. doi: 10.1086/668439

    [9]

    SCHMIDT M, BRÉCHOT N, HARIRI S, et al. Nosocomial infections in adult cardiogenic shock patients supported by venoarterial extracorporeal membrane oxygenation[J]. Clin Infect Dis, 2012, 55(12): 1633-1641. doi: 10.1093/cid/cis783

    [10]

    KIM G S, LEE K S, PARK C K, et al. Nosocomial infection in adult patients undergoing veno-arterial extracorporeal membrane oxygenation[J]. J Korean Med Sci, 2017, 32(4): 593-598. doi: 10.3346/jkms.2017.32.4.593

    [11]

    GRASSELLI G, SCARAVILLI V, DI BELLA S, et al. Nosocomial infections during extracorporeal membrane oxygenation: incidence, etiology, and impact on patients'outcome[J]. Crit Care Med, 2017, 45(10): 1726-1733. doi: 10.1097/CCM.0000000000002652

    [12] 谈宜斌, 王莹, 蔡书翰, 等. 成人体外膜肺氧合术支持治疗患者医院感染流行病学特点[J]. 中华医院感染学杂志, 2020, 30(22): 3434-3438. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-ZHYY202022017.htm
    [13]

    KIM H S, PARK S, KO H H, et al. Different characteristics of bloodstream infection during venoarterial and venovenous extracorporeal membrane oxygenation in adult patients[J]. Sci Rep, 2021, 11(1): 9498. doi: 10.1038/s41598-021-89108-4

    [14]

    SUN H Y, KO W J, TSAI P R, et al. Infections occurring during extracorporeal membrane oxygenation use in adult patients[J]. J Thorac Cardiovasc Surg, 2010, 140(5): 1125-1132, e2. doi: 10.1016/j.jtcvs.2010.07.017

    [15]

    KUMAR S, SEN P, GAIND R, et al. Prospective surveillance of device-associated health care-associated infection in an intensive care unit of a tertiary care hospital in New Delhi, India[J]. Am J Infect Control, 2018, 46(2): 202-206. doi: 10.1016/j.ajic.2017.08.037

    [16]

    CHOUDHURI A H, CHAKRAVARTY M, UPPAL R. Epidemiology and characteristics of nosocomial infections in critically ill patients in a tertiary care Intensive Care Unit of Northern India[J]. Saudi J Anaesth, 2017, 11(4): 402-407. doi: 10.4103/sja.SJA_230_17

    [17] 蔡璇, 施金玲, 李从荣, 等. 重症监护病房病原菌分布及药敏分析[J]. 中国临床药理学杂志, 2021, 37(11): 1403-1407. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-GLYZ202111024.htm
    [18]

    MOHD SAZLLY LIM S, SIME F B, ROBERTS J A. Multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infections: current evidence on treatment options and the role of pharmacokinetics/pharmacodynamics in dose optimisation[J]. Int J Antimicrob Agents, 2019, 53(6): 726-745. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2019.02.016

    [19]

    MOHD SAZLLY LIM S, NAICKER S, AYFAN A K, et al. Non-polymyxin-based combinations as potential alternatives in treatment against carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii infections[J]. Int J Antimicrob Agents, 2020, 56(4): 106115. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.106115

    [20]

    CANDEL F J, SANTERRE HENRIKSEN A, LONGSHAW C, et al. In vitro activity of the novel siderophore cephalosporin, cefiderocol, in Gram-negative pathogens in Europe by site of infection[J]. Clin Microbiol Infect, 2022, 28(3): 447.e1-447.e6.

    [21]

    BIZZARRO M J, CONRAD S A, KAUFMAN D A, et al. Infections acquired during extracorporeal membrane oxygenation in neonates, children, and adults[J]. Pediatr Crit Care Med, 2011, 12(3): 277-281. doi: 10.1097/PCC.0b013e3181e28894

    [22] 丁兴芬. ICU医院感染预防与控制的研究[J]. 实用临床医药杂志, 2017, 21(2): 138-139. doi: 10.7619/jcmp.201702045
    [23]

    ELLOUZE O, LAMIREL J, PERROT J, et al. Extubation of patients undergoing extracorporeal life support. A retrospective study[J]. Perfusion, 2019, 34(1): 50-57. doi: 10.1177/0267659118791072

    [24]

    LI B F, SUN G Q, CHENG Z, et al. Analysis of nosocomial infections in post-cardiac surgery extracorporeal membrane oxygenation support therapy[J]. Heart Surg Forum, 2018, 21(5): E387-E391. doi: 10.1532/hsf.1789

    [25]

    MONTERO S, HUANG F, RIVAS-LASARTE M, et al. Awake venoarterial extracorporeal membrane oxygenation for refractory cardiogenic shock[J]. Eur Heart J Acute Cardiovasc Care, 2021, 10(6): 585-594. doi: 10.1093/ehjacc/zuab018

  • 期刊类型引用(1)

    1. 吴晓文,李军,尧国胜,韦凌云,黄高. 不同人工肝治疗在急性肝衰竭治疗中的临床疗效对比研究. 智慧健康. 2024(25): 96-98+101 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2022-03-27
  • 网络出版日期:  2022-08-22

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